IMUNODIAGNOSTICO DA NEUROCISTICERCOSE: AVALIAÇAO DE UM ANTIGENO OBTIDO DE CISTICERCOS DE <I>TAENIA CRASSICEPS</I>





IMUNODIAGNOSTICO DA NEUROCISTICERCOSE: AVALIAÇAO DE UM ANTIGENO OBTIDO DE CISTICERCOS DE TAENIA CRASSICEPS

(especial para SIIC © Derechos reservados)
No presente trabalho relatamos a avaliação de um antígeno de cisticercos de Taenia crassiceps como possível reagente para ser utilizado em ensaios imunoenzimáticos no sorodiagnóstico da Neurocisticercose
peraltam9.jpg Autor:
Peralta, José Mauro
Columnista Experto de SIIC

Institución:
Departamento de Inmunología Instituto de Microbiología Universidad Federal de Rio de Janeiro Centro de Ciencias de la Salud RJ, Brasil


Artículos publicados por Peralta, José Mauro
Coautores
Regina H. S. Peralta*  Adelaide J. Vaz**  Adriana O. Neves***  Heloísa W. Macedo****  Luis R. Machado*****  Alessandra Pardini**** 
MD, PhD,Departamento de Patologia, Faculdade de Medicina, Universidade Federal Fluminense, Niterói, RJ, Brasil*
MD, PhD, Faculdade de Ciências Farmacêuticas, e Faculdade de Medicina, Universidade de São Paulo, SP, Brasil**
Estudande de Graduação em Microbiologia e Imunologia.Instituto de Microbiologia Professor Paulo de Góes – Universidade Federal do Rio de Janeiro.***
MD, PhD, Departamento de Patologia, Faculdade de Medicina, Universidade Federal Fluminense, Niterói, RJ, Brasil****
MD, Centro de Investigação Neurológica, Departamento de Neurologia, Universidade de São Paulo, SP, Brasil*****
Recepción del artículo
19 de Mayo, 2004
Aprobación
10 de Agosto, 2004
Primera edición
19 de Octubre, 2004
Segunda edición, ampliada y corregida
7 de Junio, 2021

Resumen
No presente trabalho relatamos a avaliação de um antígeno de cisticercos de Taenia crassiceps como possível reagente para ser utilizado em ensaios imunoenzimáticos (Western Blot e ELISA) no sorodiagnóstico da Neurocisticercose (NC). Foram utilizadas amostras clínicas (soro e líquido cefalorraquidiano-LCR) obtidas de pacientes em diferentes fases da doença. Amostras de soro e LCR de 64 pacientes com suspeita de NC de acordo com manifestações clínicas e por tomografia computadorizada do cérebro, foram testados por um ELISA utilizando como antígeno extrato total salino de Taenia solium (ELISA-Tso) e por um Western Blot com antígenos glicoprotéicos de Taenia crassiceps (WB-gpTcra). Amostras de soro foram também testadas com os ensaios de WB utilizando antígeno glicoprotéico de Taenia solium (WB-gpTso) e ELISA utilizando a glicoproteína de 14 kDa (ELISA-gp14Tcra). Amostras de soro de indivíduos considerados saudáveis e de pacientes que apresentavam outras parasitoses, foram incluídas como grupos controles. O resultados do ELISA-Tso com 64 amostras de LCR mostrou uma reatividade de 83%. A análise com as amostras de soro deste mesmo grupo mostrou uma sensibilidade de 91% para o WB-gpTcra. Os dois testes de WB mostraram 100% de concordância. A sensibilidade relativa do ELISA-gp14Tcra comparado com o WB-gpTso foi de 95% e a especificidade de 99%. Esta fração foi purificada em uma única etapa com um bom rendimento para uso em ensaios imunoenzimáticos, principalmente em inquéritos epidemiológicos e também com propósito diagnóstico na triagem de pacientes com NC.

Palabras clave
Neurocisticercose, ELISA, glicoproteínas, Taenia crassiceps, sorodiagnóstico


Artículo completo

(castellano)
Extensión:  +/-4.32 páginas impresas en papel A4
Exclusivo para suscriptores/assinantes

Abstract
We report here the evaluation of an antigen from Taenia crassiceps cysticercus as a potential reagent in an enzyme-immunoeletrotransfer blotting assay (EITB) and an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the serodiagnosis of neurocysticercosis using clinical specimens obtained from patients in different phases of the disease. Serum and cerebrospinal fluid (CSF) samples from 64 patients suspected of having neurocysticercosis (NC) according to clinical manifestation and brain computed tomography (CT) were tested by ELISA with Taenia solium total saline antigen (ELISA - Tso) and by immunoblotting with Taenia crassiceps glycoproteins antigen (EITB-gpTcra). From this serum samples 45 were also available for EITB-gpTso and 30 for ELISA-gp14 analysis. Serum samples from apparently healthy individuals without any parasitic disease and serum samples from patients with other parasitic diseases were included as controls. The results of ELISA-Tso with CSF obtained from 64 patients with NC showed that 53 (83%) were reactive. EITB-gpTcra with serum from the same group of patients showed a sensibility of 91%. The EITB-gpTso and EITB-gpTcra tested with serum samples, demonstrating an agreement of a 100% between both tests. When ELISA-gp14 results were compared to EITB-Tso results, an relative sensibility of 95% was observed and showed a specificity of 99. This fraction was purified only in one step with a good yield for use in immunoassay. We suggest that gp14 Tcra antigen can be used for detecting anti-cysticercus antibodies in serum samples for seroepidemiology and also for screening of NC patients.

Key words
Neurocysticercosis, ELISA, glycoproteins, Taenia crassiceps, serodiagnosis


Clasificación en siicsalud
Artículos originales > Expertos de Iberoamérica >
página   www.siicsalud.com/des/expertocompleto.php/

Especialidades
Principal: Diagnóstico por Laboratorio, Infectología
Relacionadas: Medicina Interna, Neurología



Comprar este artículo
Extensión: 4.32 páginas impresas en papel A4

file05.gif (1491 bytes) Artículos seleccionados para su compra



Enviar correspondencia a:
Peralta, José Mauro
Bibliografía del artículo
  1. Bueno EC, Vaz AJ, Machado LR, Livramento JA, Mielle SR. 2000. Specific Taenia crassiceps and Taenia solium antigenic peptides for neurocysticercosis immunodiagnosis using serum samples. J. Clin. Microbiol. 38, 146-151.
  2. Chung JY, Bahk YY, Huh S, Kang SY, Kong Y, Cho SY. 1999. A recombinant 10-kDa protein of Taenia solium metacestodes specific to active Neurocysticercosis. J. Infect. Dis. 180, 1307-1315.
  3. Cruz JM, Rocha A, Silva AM, Moraes AT, Guimarães AH, Salomão EC and Alcântara TM. 1995. Ocorrência de cisticercose em necrópsias realizadas em Uberlândia, Minas Gerais, Brasil. Arq. Neuropsiquiat. 53, 227-232.
  4. De Simone SG, Santos R, Araujo MF and Pinho RT. 1994. Preparative isolation of the lectin jacalin by anion-exchange high-performance liquid chromatography. J. Chromatog. A 688, 357-362.
  5. Del Brutto OH, Sotelo J. 1988. Neurocysticercosis: an update. Reviews Infec. Diaseases 10,1075-1087.
  6. Espíndola NM, De Gaspari EN, Nakamura PM, Vaz AJ. 2000. Cross-reactivity of anti-Taenia crassiceps cysticerci immune antibodies with Taenia solium antigens. Vet. Parasitol. 89, 321-326.
  7. Ev LV, Maia AA, Pianetti G, Nascimento E. 1999. Immunological evaluation of a 26-kDa antigen from Taenia solium larvae for specific immunodiagnosis of human neurocysticercosis. Parasitol. Res. 85, 98-102.
  8. Garcia E, Ordoñez G, Sotelo J. 1995. Antigens from Taenia crassiceps cysticerci used in complement fixation, enzyme-linked immunosorbent assay, and western blot ( immunoblot) for diagnosis of neurocysticercosis. J. Clin. Microbiol. 33, 3324-3325.
  9. Greene RM, Hancock K, Wilkins PP, Tsang VC. 2000. Taenia solium: Molecular cloning and Serologic evaluation of 14- and 18- kDa related, diagnostic antigens. J. Parasitol. 86, 1001-1007.
  10. Ito A, Plancarte A, Ma L, Kong Y, Flisser A, Cho SY, Liu YH, Kamhawi S, Lightowlers MW, Schantz PM. 1998. Novel antigens for neurocysticercosis: simple method for preparation and evaluation for serodiagnosis. Am. J. Trop. Med. Hyg. 59, 291-294.
  11. Kaur M, Goyal R, Ganguly NK, Mahajan RC, Malla N. 1996. Evaluation and Characterization of purified antigenic fraction-II of Cysticercus cellulosae by Enzyme-linked Immunosorbent assay for the diagnosis of neurocysticercosis before and after treatment. Immunol. Infect. Diseas. 6, 25-29.
  12. Larralde C, Sotelo J, Montoya RM, Palencia G, Padilla A, Govenzensky T, Diaz ML, Sciutto E. 1990. Immunodiagnosis of Human Cysticercosis in Cerebrospinal Fluid. Antigens from murine Taenia crassiceps Cysticerci effectively substitute those from porcine Taenia solium. Arch. Pathol. Lab. Med. 114, 926-928.
  13. Machado LM, Nobrega JP, Barros NG, Livramento JA, Bacheschi LA, Spina-França A. 1987. Computed Tomography in Neurocysticercosis. A 10-years long evolution analysis of 100 patients with an appraisal of a new classification. Arq. NeuroPsiquiatr. 48, 415-418.
  14. Rodriguez-Canul R, Allan JC, Fletes C, Sutsna IP, Kapti IN, Craig PS. 1997. Comparative evaluation of purified Taenia solium glycoprotein and crude metacestode extracts by immunoblotting for the serodiagnosis of human T. solium cysticercosis. Clin. Diag. Lab. Immunol. 4, 579-582.
  15. Sako Y, Nakao M, Ikejima T, Piao XZ, Nakaya K, Ito A. 2000. Molecular characterization and diagnostic value of Taenia solium low-molecular-weight antigen genes. J. Clin. Microbiol. 38, 4439-4444.
  16. Shiguekawa KY, Mineo JR, Moura LP, Costa-Cruz JM. 2000. ELISA and Western Blotting tests in the detect of IgG antibodies to Taenia solium metacestodes in serum samples in human neurocysticercosis. Trop. Med. Internat.Health 5, 443-449.
  17. Sloan L, Schneider S, Rosenblatt J. 1995. Evaluation of enzyme-linked immunoassay for serological diagnosis of cysticercosis. J. Clin. Microbiol. 33, 3124-3128.
  18. Takayanagui OM. 1990. Neurocisticercose. I. Evolução clínico-laboratorial de 151 casos. Arq. NeuroPsiquiatr. 48, 11-15.
  19. Teixeira MG, Borges-Pereira J, Netizert E, Souza ML, Peralta JM. 1994. Development and evaluation of an enzyme linked immunotransfer blot technique for serodiagnosis of Chagas disease. Trop. Medi. Parasitol. 45, 308-312.
  20. Tsang VC, Brand JA, Boyer AE. 1989. An enzyme-linked immunoelectrotransfer blot assay and glycoprotein antigens for diagnosing human cysticercosis (Taenia solium). J. Infec. Dis. 159, 50-59.
  21. Vaz AJ, Nunes CM, Piazza RM, Livramento JA, Nakamura PM, Ferreira AW. 1997. Immunoblot with cerebrospinal fluid from patients with neurocysticercosis using antigen from cysticerci of Taenia solium and Taenia crassiceps. Am. J. Trop. Med. Hyg. 57, 354-357.
  22. White AC. 1997. Neurocysticercosis: a major cause of neurological disease worlwide. Clin. Infect. Dis. 24, 101 – 115.
  23. White AC. 2000. Neurocysticercosis: Update on epidemiology, pathogenesis, diagnosis, and management. Annu. Rev. Med., 51: 187-206.
  24. Zini D, Farrel VJ, Wadee AA. 1990. The relationship of antibody levels to the clinical spectrum of human neurocysticercosis. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry 53, 656-661.

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Está expresamente prohibida la redistribución y la redifusión de todo o parte de los contenidos de la Sociedad Iberoamericana de Información Científica (SIIC) S.A. sin previo y expreso consentimiento de SIIC.
ua31618